CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班2020（2月北京班）_门票优惠

-会议内容-

CRISPR是继RNA干扰技术、高通量测序技术等之后生物科学发展历史上最具颠覆性技术之一，使用高效、迅速且简单，在生物医学研究领域引起一场巨变，并因此成为生物医学实验室常规技术。随着CRISPR基因治疗临床实验的初步成功，以及2018年的基因编辑婴儿事件预热，CRISPR技术被越来越多的研究人员用来改造人类基因以消除疾病，创造生命力更加顽强的植物，消灭病原体等。在过去的7年中CRISPR技术斩获了生命科学领域各种重量级奖项，包括生命科学突破奖，盖尔德纳国际奖等，《Science》年度突破、《Nature》年度人物均授予了CRISPR单碱基基因编辑技术的突破，2019年9月，北京大学邓宏魁组完成世界首例基因编辑治疗艾滋病和白血病，使CRISPR技术再一次成为生命科学的焦点。

随着近几年的发展，研究者开发出越来越多基于CRISPR的新型基因编辑技术，例如CRISPR转录激活/抑制技术，基因定位，表观遗传修饰，单碱基基因编辑系统（BE2，BE3，ABE等），CRISPR基因突变检测系统（Sherlock、DETECTR），无修复模板基因敲入技术等。CRISPR/Cas9系统的应用更加便捷、高效，也更广泛，目前该技术成功应用于人类细胞、斑马鱼、小鼠以及细菌等基因组精确修饰，成为科研人员的强大工具，基于CRISPR临床实验已经取得初步成功。

为了让更多的科研人员及时全面的掌握CRISPR最新技术，并应用的相应的领域研究中。特于2020年2月22日至23日在北京举办CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班。在带教教师的指导下，学员独立完成一系列全部实验，免费获得三份CRISPR/Cas9敲除质粒载体（可以用于哺乳动物、植物、真菌、细菌、斑马鱼、线虫等，共60种）。免费赠送sgRNA离线设计软件（有基因组DNA序列即可设计！）

举办地点：

北京市西城区德外大街11号康华伟业孵化器A325-A343（近北京师范大学）

参加对象

从事医学、生命科学、农学等领域科研工作者和高校教师及研究生。

授课方式

1.理论讲授。

2.每位学员在辅导教师的指导下，独立完成实验操作。（可选）

CRISPR 质粒清单
Plant	#50588	pHSN401	CRISPR/Cas based plant genome editing and gene regulation; expresses 3×FLAG-NLS-zCas9-NLS, gRNA scaffold for insertion of target sequence (AtU6-26 promoter), Hyg resistance
	#63142	pRGEB32	(Empty Backbone) Express sgRNA/PTG with rice snoRNA U3 promoter and Cas9 with rice ubiquitin promoter for Agrobacterium-mediated transformation.
	#51295	pRGEB31	(Empty Backbone) Binary vector derived from pRGE31. Deliver sgRNA and Cas9 into plant. by agrobacterium mediated transformation.
Insect	#49330	pAc-sgRNA-Cas9	Expresses sgRNA and Cas9-Puro in Drosophila S2 cells
C.elegans	#47549	pDD162	Cas9 + sgRNA plasmid that can be modified to cleave any Cas9 target site in the C. elegans genome.
Yeast Bateria	#43804	p415	Human Optimized S. pyogenes Cas9
Yeast Bateria	#42875	pCRISPR	A crRNA expression plasmid for targeting a specific sequence
	#84379	pRH2502	Expression of dcas9 D10A H840A from a TetR-regulated uvtetO promoter
	#84380	pRH2521	Expression of sgRNA from a imyc promoter (Pimyc)
	#61737	pCRISPomyces-2	Streptomyces expression of codon-optimized Cas9 and custom gRNA
	#42876	pCas9	Bacterial expression of Cas9 nuclease, tracrRNA and crRNA guide
Zebrafish	#47929	pCS2-nCas9n	expression of an optimized Cas9 for genome-editing in zebrafish
Mammalian	#52970	FokI-dCas9	Expresses Fok1 nuclease domain fused to catalytically inactive Cas9 DNA-binding domain in mammalian cells
	#61591	PX601	A single vector AAV-Cas9 system containing Cas9 from Staphylococcus aureus (SaCas9) and its sgRNA.
	#42229	PX260	This plasmid separately encodes a human codon-optimized SpCas9, a tracrRNA and customizable crRNA.
	#42230	PX330	A human codon-optimized SpCas9 and chimeric guide RNA expression plasmid.
	#48138	PX458[GFP]	Cas9 from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA
	#48139	PX459[Puromycin]	Cas9 from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA (V2.0)
	#48140	PX461	Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA
	#48141	PX462[Cas9n,Puromycin]	Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA
	#50661	pCW-Cas9[Tet-on,Puromycin]	Inducible lentiviral expression of SpCas9
	#52963	LentiGuide-puro-Vector	Expresses S. pyogenes CRISPR chimeric RNA element with customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter. Lentiviral backbone.
	#52962	lentiCas9-Blast	Expresses human codon-optimized S. pyogenes Cas9 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. 3rd generation lentiviral backbone.
	#69982	pY010 (pcDNA3.1-hAsCpf1)	Expresses humanized AsCpf1
	#19319	pLJM1-EGFP	(Empty Backbone) 3rd gen lentiviral vector for EGFP fusion; PGK driven puromycin
	#12259	pMD2.G	VSV-G envelope expressing plasmid
	#12260	psPAX2	Lentivirus package plasmids
	#61427	lenti sgRNA(MS2)_zeo backbone	(Empty Backbone) 3rd generation lenti sgRNA cloning backbone with MS2 loops at tetraloop and stemloop 2 and EF1a-zeo resistance marker. Contains BsmBI sites for insertion of spacer sequences.
	#61426	lenti MS2-P65-HSF1_Hygro	lenti vector encoding the MS2-P65-HSF1 activator helper complex with a 2A Hygro resistance marker (EF1a-MS2-p65-HSF1-2A-Hygro-WPRE)
	#61425	lenti dCAS-VP64_Blast	3rd generation lenti vector encoding dCAS9-VP64 with 2A Blast resistance marker (EF1a-NLS-dCas9(N863)-VP64-2A-Blast-WPRE)
	#71814	eSpCas9(1.1)	Expresses high specificity SpCas9. Px330-like plasmid.
	#47327	pET-28b-Cas9-His	For in vitro expression and purification of Cas9 protein
	#62934	pET-NLS-Cas9-6xHis	Expression of NLS-Cas9-6xHis in bacterial cells
	86840	pJH373	mamalian expression of AcrIIA2
	84750	Lenti-AsCpf1-Blast	Expresses human codon-optimized AsCpf1 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. Lentiviral backbone.
	84752	Lenti_gRNA-Puro	(Empty Backbone) Expresses Cpf1 customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter
	79145	pCAG-eCas9-GFP-U6-gRNA	All-in-one CRISPR/Cas9 vector with high-fidelity eSpCas9 expression in human pluripotent stem cells
	84745	pY30	Expresses huAsCpf1-P2A-puro and crRNA guide
	84743	pY094	Expresses huAsCpf1-T2A-GFP and crRNA guide
	84741	pY026	Expresses huAsCpf1 and crRNA guide
	60958	PX552	pAAV-U6sgRNA(SapI)_hSyn-GFP-KASH-bGH (SpGuide acceptor). AAV plasmid for sgRNA cloning. GFP-KASH fusion facilitates FACS sorting of cells and nuclei.
	79152	pC003 - LshC2C2 locus into pACYC184 for spacer cloning	LshC2c2 locus in pACYC184 with BsaI sites for spacer cloning
	79150	pC001 - huLshC2C2-MBP for bacterial expression	Expresses human codon-optimized LshC2c2 for purification in E. coli
	64324	pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mCherry	Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to mCherry via a T2A peptide
	64222	pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mcherry-P2A-Ad4E4orf6	Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked via T2A to mCherry linked to the Ad4 E4orf6 gene via P2A
	64218	pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP-P2A-Ad4E1B	Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked to BFP via T2A linked to Ad4 E1B via P2A
	64323	pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP	Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to BFP via a T2A peptide
	51023	pSLQ1658-dCas9-EGFP	Template for NLS-dCas9-NLS-EGFP fusion protein for CRISPR imaging (the recipient vector can be TetON 3G promoter system)
	64108	pHAGE-TO-dCas9-3XmCherry	Expression of Sp dCas9-3XmCherry in mammalian cells
	60957	PX551	pAAV-pMecp2-SpCas9-spA (AAV-SpCas9). AAV plasmid expressing Cas9 in neurons under control of truncated mecp2 promoter.
	100806	BE4-Gam	Expresses BE4-Gam in mammalian cells
	100809	SaBE4-Gam	Expresses SaBE4-Gam in mammalian cells
	102917	pCMV-ABE7.8	expresses ABE7.8 in mammalian cells
	102919	pCMV-ABE7.10	expresses ABE7.10 in mammalian cells
	108382	xCas9(3.7)-ABE(7.10)	Mammalian expression vector for xCas9(3.7)-ABE

-主办方介绍-

北京微旋基因技术有限公司

公司主营业务为通过基因检测、质谱检测、生物信息分析等手段，为医疗机构、科研机构、企事业单位等提供基因组学类的检测和研究服务。微旋基因秉承“基因科技造福人类”的愿景，以推动生命科学研究进展、生命大数据应用和提高全球医疗健康水平为出发点，基于基因领域研究成果及精准检测技术在民生健康方面的应用，致力于加速科技创新，减少出生缺陷，加强肿瘤防控，抑制重大疾病对人类的危害，实现精准治愈感染，全面助力精准医学。公司主要服务于国内外的科研院校、研究所、独立医学检验实验室、制药公司等机构，以及国内外的各级医院、体检机构等医疗卫生机构、公司客户和大众客户。目前，公司业务已经覆盖了上百家医疗机构，其中三甲医院30多家一直与我们保持着量好的业务和科研合作，与各个地区合作的海内外医疗和科研机构超过100家。公司致力于基因技术的临床应用，细胞治疗和药物研发，汇聚了来自国内外医学、分子生物学、基因组学、生物信息学、计算机科学等各个领域的专业技术人才。

日期	时间	培训内容
2月22日	8:00-8:50	培训报到
2月22日	9:00-11:30	理论讲解：一、基因编辑技术简介（三代基因编辑工具） 1. ZFN 2.TALEN 3.CRISPR 二、CRISPR/Cas9基因编辑技术原理 1. CRISPR/Cas9发现历史 2. CRISPR/Cas9作用机制解析 3. CRISPR/Cas9系统改造策略
2月22日	13:00-17:00	理论讲解：一、sgRNA在线设计构建实战演练(1.靶基因序列查找2.sgRNA在线设计合成) 二、CRISPR/Cas9转染策略: 1.生物转染（慢病毒、腺相关病毒等） 2.物理转染（电转核酸/RNP、显微注射、基因枪） 3.化学转染（脂质体、阳离子聚合物）三、CRISPR/Cas9 sgRNA效率检测，脱靶检测及解决策略 1、高保真Cas9（espCas9、Hifi-Cas9、Cluster1-Cas9）
2月23日	9:00-11:30	理论讲解：一、CRISPR技术应用解析 1.基因敲除（单基因敲除、多基因敲除、大片段删除、多靶点sgRNA载体构建策略） 2.基因敲入实战演练（gRNA选择、同源臂设计、导入，长片段导入策略/提高基因敲入效率策略，PITCh、HITI、CRISPR-转座酶高效基因敲入系统） 3.CRISPR在转录调控中的应用（转录激活、转录抑制系统） 4.CRISPR靶基因标记定位二、CRISPR案例解析 1.基因敲除在小鼠模型构建、植物、细胞、细菌、真菌等中的应用案例解析 2.基于CRISPR的全基因组基因敲除高通量筛选策略（文库构建，选择，流程优化等） 3.基于CRISPR的全基因组转录激活/抑制高通量筛选策略（文库构建，选择，流程优化等）三、CRISPR/Cas9与基因沉默技术（siRNA、shRNA）系统比较。
2月23日	13:00-17:00	理论讲解：一、单碱基基因编辑技术简介及在基因治疗中的应用 1.HF2-BE2 2.BE3系统 3.ABE系统4.单碱基基因编辑脱靶克服。二、基因CRISPR的基因检测系统 1、CRISPR-Cas12a系统介绍(DETECTR) 2、CRISPR-Cas13a系统介绍(SHERLOCK-多重病原菌检测) 三、CRISPR/Cas9系统在肿瘤和遗传病治疗中应用解析 1、CRISPR结合免疫检查点抑制剂治疗肿瘤 2、单基因遗传病治疗（DMD、先天性黑朦、地中海贫血等） 3、CRISPR治疗HIV-基因编辑婴儿解析 4、CRISPR治疗HIV炎性白血病病例解析四、新一代无模板基因敲入系统解析 1. 1、CRISPR Primer-editing 基因敲入原理及应用

日期	时间	培训内容
2月23日	18:00	实验操作：CRISPR/Cas9敲除质粒转染靶细胞
2月24日	9:00-11:30	实验操作：一、CRISPR/Cas9基因表达载体克隆构建1.sgRNA设计合成 2.敲除载体选择及线性化 3.sgRNA连接，转化等
2月24日	13:00-17:00	实验操作： 1.CRISPR/Cas9转染后靶DNA检测 2.靶基因修饰位点扩增及鉴定 3. CRISPR基因敲除效果检测

刘刚博士

2008年博士毕业于中国科学院上海生命科学研究院，从事肿瘤干细胞，细胞衰老，肿瘤转移等细胞作用网络和通路的研究，并作为骨干研究人员参加了973计划项目、国家自然科学基金重点项目、在香港中文大学做为作为Postdoc和Research fellow，从事研究工作。先后Nature Genetics，cell research、PLOS one等期刊发表论文十余篇。

-会议门票-

注册费：3200元/人，

2020年2月13号之前汇款报名可以优惠至：3000元/人。

实验操作课程需加500元/人。同一个单位三个人以上报名可以免费构建价值1500元的质粒一个；包括学费、资料费、试剂耗材费、其他材料费；免费提供工作午餐，住宿用自理。

-场馆介绍-

康华伟业孵化器A325-A343（近北京师范大学）

会议标签：

CRISPR Cas9 基因细胞生物学生命科学生物治疗基因靶向

活动家提供CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班2020（2月北京班）官网最新门票优惠(更新于:2019年12月27日)。CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班2020（2月北京班）将于2020年02月22日在北京召开，优惠票在线报名截止2020年02月22日。一键查询CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班2020（2月北京班）会议通知及邀请函下载，包含开会时间地点、嘉宾演讲主题、日程、价格等会议信息，报名CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班2020（2月北京班），轻松快捷。

CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班2020（2月北京班）

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2025第十三届国际基因节

2025中国生命科学大会暨中国生命科学博览会