会议详情 |
2019-11-23 09:00 至 2019-11-24 17:00
50人
推荐会议:2025(第七届) 世界细胞治疗与再生医学大会暨展览会
发票类型:增值税普通发票
参会凭证:现场凭电话姓名参会
海思科医药集团股份有限公司
CRISPR是生物科学领域的颠覆性技术,使用高效、迅速且简单,在生物医学研究领域引起一场巨变,并因此席卷全球实验室。研究人员利用它改造人类基因以消除疾病,创造生命力更加顽强的植物,并且消灭病原体。《Science》2017年度突破、《Nature》2017年度人物均授予了CRISPR相关技术的突破,CRISPR技术再一次成为生命科学的焦点。
随着近几年的发展,研究者开发出越来越多基于CRISPR的新型基因编辑技术,例如CRISPRa/i,基因定位,表观遗传修饰,高通量筛选技术,单碱基基因编辑系统(BE2,BE3,ABE等),CRISPR/C2c2基因突变检测系统等。CRISPR/Cas9系统的应用更加便捷、高效,也更广泛,目前该技术成功应用于人类细胞、斑马鱼、小鼠以及细菌等基因组精确修饰,成为科研人员的强大工具,基于CRISPR临床实验已经取得初步成功。
为了让更多的科研人员及时全面的掌握CRISPR最新技术,并应用的相应的领域研究中。特于2019年11月23日至24日在重庆解放碑新华酒店酒店举办CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班。赠送价值3千元的CRISPR/Cas9敲除质粒载体3个(可以用于哺乳动物、植物、真菌、细菌、斑马鱼、线虫等,共60种)。免费赠送sgRNA离线设计软件(有基因组DNA序列即可设计!)。
举办地点:重庆市渝中区解放碑青年路9号(重庆解放碑新华酒店)
参加对象
从事医学、生命科学、农学等领域科研工作者和高校教师及研究生。
授课方式
理论讲授和实际演练紧密结合。
公司主营业务为通过基因检测、质谱检测、生物信息分析等手段,为医疗机构、科研机构、企事业单位等提供基因组学类的检测和研究服务。微旋基因秉承“基因科技造福人类”的愿景,以推动生命科学研究进展、生命大数据应用和提高全球医疗健康水平为出发点,基于基因领域研究成果及精准检测技术在民生健康方面的应用,致力于加速科技创新,减少出生缺陷,加强肿瘤防控,抑制重大疾病对人类的危害,实现精准治愈感染,全面助力精准医学。 公司主要服务于国内外的科研院校、研究所、独立医学检验实验室、制药公司等机构, 以及国内外的各级医院、体检机构等医疗卫生机构、公司客户和大众客户。目前,公司业务已经覆盖了上百家医疗机构,其中三甲医院30多家一直与我们保持着量好的业务和科研合作,与各个地区合作的海内外医疗和科研机构超过100家。 公司致力于基因技术的临床应用,细胞治疗和药物研发,汇聚了来自国内外医学、分子生物学、基因组学、生物信息学、计算机科学等各个领域的专业技术人才。
课程安排:
日期 |
时间 |
培训内容 |
11月22日 |
10:00-18:00 |
培训报到 |
11月23日 |
9:00-11:30 |
理论讲解: 一、基因编辑技术简介(三代基因编辑工具) 1. ZFN 2.TALEN 3.CRISPR 二、CRISPR/Cas9基因编辑技术原理 1. CRISPR/Cas9发现历史 2. CRISPR/Cas9作用机制解析 3. CRISPR/Cas9系统改造策略 |
13:00-17:00 |
理论讲解: 一、sgRNA在线设计构建实战演练(1.靶基因序列查找2.sgRNA在线设计合成) 二、CRISPR/Cas9转染策略: 1.生物转染(慢病毒、腺相关病毒等) 2.物理转染 (电转核酸/RNP、显微注射、基因枪) 3.化学转染 (脂质体、阳离子聚合物) 三、CRISPR/Cas9 sgRNA效率检测,脱靶检测及解决策略 1、高保真Cas9(espCas9、Hifi-Cas9、Cluster1-Cas9) |
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11月24日 |
9:00-11:30 |
理论讲解: 一、CRISPR技术应用解析 1.基因敲除(单基因敲除、多基因敲除、大片段删除、多靶点sgRNA载体构建策略) 2.基因敲入实战演练(gRNA选择、同源臂设计、导入,长片段导入策略/提高基因敲入效率策略,PITCh、HITI) 3.CRISPR在转录调控中的应用(转录激活、转录抑制系统) 4.CRISPR靶基因标记定位 二、CRISPR案例解析 1.基因敲除在小鼠模型构建、植物、细胞、细菌、真菌等中的应用案例解析 2.基于CRISPR的全基因组基因敲除高通量筛选策略 3.基于CRISPR的全基因组转录激活/抑制高通量筛选策略 三、CRISPR/Cas9与基因沉默技术(siRNA、shRNA)系统比较。 |
13:00-17:00 |
理论讲解: 一、单碱基基因编辑技术简介及在基因治疗中的应用 1.HF2-BE2 2.BE3系统 3.ABE系统4.单碱基基因编辑脱靶克服。 二、基因CRISPR的基因检测系统 1、CRISPR-Cpf1系统介绍(DETECTR) 2、CRISPR-C2c2系统介绍(SHERLOCK) 三、CRISPR/Cas9系统在肿瘤和遗传病治疗中应用解析 1、CRISPR结合免疫检查点抑制剂治疗肿瘤 2、单基因遗传病治疗(DMD、先天性黑朦、地中海贫血等) 3、CRISPR治疗HIV-基因编辑婴儿解析 |
CRISPR 质 粒 清 单 |
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Plant |
#50588 |
pHSN401 |
CRISPR/Cas based plant genome editing and gene regulation; expresses 3×FLAG-NLS-zCas9-NLS, gRNA scaffold for insertion of target sequence (AtU6-26 promoter), Hyg resistance |
#63142 |
pRGEB32 |
(Empty Backbone) Express sgRNA/PTG with rice snoRNA U3 promoter and Cas9 with rice ubiquitin promoter for Agrobacterium-mediated transformation. |
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#51295 |
pRGEB31 |
(Empty Backbone) Binary vector derived from pRGE31. Deliver sgRNA and Cas9 into plant. by agrobacterium mediated transformation. |
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Insect |
#49330 |
pAc-sgRNA-Cas9 |
Expresses sgRNA and Cas9-Puro in Drosophila S2 cells |
C.elegans |
#47549 |
pDD162 |
Cas9 + sgRNA plasmid that can be modified to cleave any Cas9 target site in the C. elegans genome. |
Yeast |
#43804 |
p415 |
Human Optimized S. pyogenes Cas9 |
Bateria |
#42875 |
pCRISPR |
A crRNA expression plasmid for targeting a specific sequence |
#61737 |
pCRISPomyces-2 |
Streptomyces expression of codon-optimized Cas9 and custom gRNA |
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Zebrafish |
#47929 |
pCS2-nCas9n |
expression of an optimized Cas9 for genome-editing in zebrafish |
Mammalian |
#52970 |
FokI-dCas9 |
Expresses Fok1 nuclease domain fused to catalytically inactive Cas9 DNA-binding domain in mammalian cells |
#61591 |
PX601 |
A single vector AAV-Cas9 system containing Cas9 from Staphylococcus aureus (SaCas9) and its sgRNA. |
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#42230 |
PX330 |
A human codon-optimized SpCas9 and chimeric guide RNA expression plasmid. |
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#48138 |
PX458 |
Cas9 from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA |
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#48139 |
PX459 |
Cas9 from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA (V2.0) |
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#48140 |
PX461 |
Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA |
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#48141 |
PX462 |
Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA |
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#50661 |
pCW-Cas9 |
Inducible lentiviral expression of SpCas9 |
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#52963 |
LentiGuide-puro-Vector |
Expresses S. pyogenes CRISPR chimeric RNA element with customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter. Lentiviral backbone. |
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#52962 |
lentiCas9-Blast |
Expresses human codon-optimized S. pyogenes Cas9 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. 3rd generation lentiviral backbone. |
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#69982 |
pY010 |
Expresses humanized AsCpf1 |
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#19319 |
pLJM1-EGFP |
(Empty Backbone) 3rd gen lentiviral vector for EGFP fusion; PGK driven puromycin |
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#12260 |
Lentivirus package plasmids |
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#61427 |
lenti sgRNA(MS2)_zeo |
(Empty Backbone) 3rd generation lenti sgRNA cloning backbone with MS2 loops at tetraloop and stemloop 2 and EF1a-zeo resistance marker. Contains BsmBI sites for insertion of spacer sequences. |
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#61426 |
lenti MS2-P65-HSF1_Hygro |
lenti vector encoding the MS2-P65-HSF1 activator helper complex with a 2A Hygro resistance marker (EF1a-MS2-p65-HSF1-2A-Hygro-WPRE) |
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#61425 |
lenti dCAS-VP64_Blast |
3rd generation lenti vector encoding dCAS9-VP64 with 2A Blast resistance marker (EF1a-NLS-dCas9(N863)-VP64-2A-Blast-WPRE) |
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#71814 |
eSpCas9(1.1) |
Expresses high specificity SpCas9. Px330-like plasmid. |
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#47327 |
pET-28b-Cas9-His |
For in vitro expression and purification of Cas9 protein |
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#62934 |
pET-NLS-Cas9-6xHis |
Expression of NLS-Cas9-6xHis in bacterial cells |
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86840 |
pJH373 |
mamalian expression of AcrIIA2 |
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84750 |
Lenti-AsCpf1-Blast |
Expresses human codon-optimized AsCpf1 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. Lentiviral backbone. |
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84752 |
Lenti_gRNA-Puro |
(Empty Backbone) Expresses Cpf1 customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter |
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79145 |
pCAG-eCas9-GFP-U6-gRNA |
All-in-one CRISPR/Cas9 vector with high-fidelity eSpCas9 expression in human pluripotent stem cells |
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84745 |
pY30 |
Expresses huAsCpf1-P2A-puro and crRNA guide |
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84743 |
pY094 |
Expresses huAsCpf1-T2A-GFP and crRNA guide |
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84741 |
pY026 |
Expresses huAsCpf1 and crRNA guide |
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79152 |
pC003 |
LshC2c2 locus in pACYC184 with BsaI sites for spacer cloning |
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79150 |
pC001 |
Expresses human codon-optimized LshC2c2 for purification in E. coli |
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64324 |
pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mCherry |
Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to mCherry via a T2A peptide |
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64222 |
pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mcherry-P2A-Ad4E4orf6 |
Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked via T2A to mCherry linked to the Ad4 E4orf6 gene via P2A |
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64218 |
pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP-P2A-Ad4E1B |
Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked to BFP via T2A linked to Ad4 E1B via P2A |
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64323 |
pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP |
Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to BFP via a T2A peptide |
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51023 |
pSLQ1658-dCas9-EGFP |
Template for NLS-dCas9-NLS-EGFP fusion protein for CRISPR imaging (the recipient vector can be TetON 3G promoter system) |
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64108 |
pHAGE-TO-dCas9-3XmCherry |
Expression of Sp dCas9-3XmCherry in mammalian cells |
刘刚博士
2008年博士毕业于中国科学院上海生命科学研究院,从事肿瘤干细胞,细胞衰老,肿瘤转移等细胞作用网络和通路的研究,并作为骨干研究人员参加了973计划项目、国家自然科学基金重点项目、在香港中文大学做为作为Postdoc和Research fellow,从事研究工作。先后Nature Genetics,cell research、PLOS one等期刊发表论文十余篇。
注册费: 3200元/人,2019年11月15号之前汇款报名可以优惠至:3000元/人。
同一个单位三个人以上报名可以免费构建价值1500元的质粒一个。包括学费、资料费、试剂耗材费、其他材料费;免费提供工作午餐,可协助安排住宿,住宿费用自理。
推荐酒店:重庆解放碑新华酒店,豪华大床房:360元(含早餐)
豪华双床房:360元(含早餐)
交通指南:
解放碑/洪崖洞
步行距离140米(约2分钟)
江北国际机场
驾车距离22.8公里(约34分钟)
五桥机场
驾车距离262.1公里(约189分钟)
重庆火车站
驾车距离5.4公里(约11分钟)
重庆北站
驾车距离7.7公里(约13分钟)
市中心
驾车距离3.3公里(约8分钟)
解放碑步行街
步行距离320米(约5分钟)
观音桥步行街
驾车距离8.1公里(约19分钟)
新华酒店(重庆解放碑洪崖洞店)-重庆解放碑新华酒店位于解放碑步行街上,离网红景点八一路好吃街、洪崖洞、长江索道步行几分钟即可到店,离两江夜景游轮也很便捷;酒店旁有机场大巴、轻轨2号线临江门站、公交站,交通便捷;酒店旁有时代广场、重百大楼、大都会、八一广场、大融城、日月光购物中心等多个大型商场。 酒店是重庆新华书店集团公司投资兴建的一家设备完善,档次豪华集商务、会议、旅游、休闲为一体的综合性酒店。酒店环境幽雅,装修风格以书籍-陶器-绘画,展示中华文化艺术,以唐诗-宋诗-元曲,展现中华古典文化。 酒店设施齐全,配有数字电视、中央空调、冷藏冰箱、保险柜、雨伞、吹风、洗漱用品、书籍等;千兆光纤网络,无需wifi密码即可登录对应房号的无线网络。酒店只针对在店客人开设了55个停车位,入住期间可免费停车。酒店7楼设特色餐厅及21间豪华包间,中国十大名厨带您领略川、渝、粤的文化意境,尽享人间奇珍。
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2024-11-30广州